为了数据质量、结果产出及顺利投稿,必须注意生物学重复问题。考虑到个体差异,后期组间统计学分析以及偏离样本,自然环境至少3个生物学重复,推荐5个;若是人类的肠道、粪便等样品,由于个体特异性高,建议10个以上的重复。从科学的角度来讲,最好能够整批样品同时测序分析,既可以减少不同批次间的系统误差,还能节省项目周期。若样品准备有困难,也可以分批次启动,但由此可能带来系统误差问题。
ITS测序主要是针对真菌多样性的研究,注释准确度高;18S测序针对的是真核微生物,注释到的范围广,但是就真菌来说精确度相对较低;可根据研究目的合理选择测序方案。
扩增子主要分为16S、18S、ITS等测序,关注环境样本中的物种组成,该技术物美价廉,实用性高。宏基因组关注环境样本中的物种组成、功能组成及代谢通路等信息,该技术深入挖掘环境样本功能层面的信息。
DGGE等分子指纹图谱技术,在其实验结果中往往只含有数十条条带,只能反映出样品中的优势种群,需要标准菌株,且受到凝胶电泳特性的局限,无法检测到稀有菌群的种类,因此其重复性和分辨率都不甚理想。而高通量测序技术能同时对样品中的优势种群及微量菌进行检测,获得样品中的微生物群落组成,并将其含量进行数字化。
Miseq PE300平台测序长度为600bp,但其测序质量较差,质控需要过滤掉超过100bp质量较差的序列;Hiseq2500 PE250平台测序质量较好,但测序总长度为500bp,去掉12bp的barcode和部分质量较差的序列之后只剩460bp左右。所以保守起见,扩增子片段长度不能超过460bp,否则双端测序结果将无法进行拼接,在引物选择时应引起注意。
1. 覆盖范围:全基因组BSA可以覆盖整个基因组,而RNAseq只对编码区进行测序。
2. 基因检测的偏好性:全基因组BSA对基因的检测较均匀,无偏好性,不受时间或者组织的影响。RNAseq偏向于在特定时间或者组织中高表达的基因。
3. 区域偏好性:基因分布不均匀,若一些区域基因密度低,用RNAseq可能漏掉。
4. 多态性:基因组的多态性多数位于非编码区,采用RNAseq检测到的多态性较低,只有少数与突变位点连锁的多态性标记能被RNAseq检测到。因此,采用全基因组BSA更容易检测到与目标基因连锁的多态性标记。
BSA性状定位是基于SNP,通过比较SNP频率差异进行分析的,EMS诱发的是点突变,所以EMS诱发的突变适合这种分析方式;其他的诱变方式诱发的大部分是结构变异,在SNP水平上可能找不到导致目标性状差异的区域,所以不适合SNP频率分析的方法。
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